Peptidmodifikationsdienstleistungen für die spezialisierte Forschung
Peptidmodifikationen können vorgenommen werden, um die terminale Ladung, die Struktur, die analytische Nachweisbarkeit, das Konjugationsverhalten, die Löslichkeit, die Stabilität oder die experimentelle Kompatibilität zu verändern. Ausgewählte terminale Modifikationen, Fluoreszenzmarkierungen, Affinitätsmarker, Cyclisierungsstrategien, Linker, PEG-Ketten, Lipidgruppen und nicht-standardmäßige Aminosäuren können bereitgestellt werden, nachdem die Machbarkeit der Sequenz geprüft wurde.

Warum wird ein Peptid modifiziert?
Ein herkömmliches lineares Peptid verfügt möglicherweise nicht über alle Eigenschaften, die für ein bestimmtes Experiment erforderlich sind. Daher kann eine funktionelle Gruppe eingebaut werden, damit das Peptid nachgewiesen, immobilisiert, konjugiert, zyklisiert, stabilisiert oder analytisch unterschieden werden kann.
Jede angebundene Gruppe verändert jedoch die Molekülstruktur. Folglich können sich auch das Molekulargewicht, die Hydrophobie, die Ladung, die Löslichkeit, das Reinigungsverhalten und die analytische Reaktion ändern.
Bachem und GenScript führen unter den kommerziell erhältlichen Optionen Modifikationen wie Acetylierung, Amidierung, Biotinylierung, Fluoreszenzfarbstoffe, Cyclisierung, PEGylierung, Click-Chemie-Handles, Phosphorylierung, Lipidierung, Isotopenmarkierung und Trägerkonjugation auf.
Änderungskategorien
Änderungen am Terminal
In Betracht kommen die N-terminale Acetylierung, die C-terminale Amidierung, die Anlagerung einer terminalen Fettsäure sowie ausgewählte Endgruppen.
Fluoreszenz- und Affinitätsmarker
Es können Biotin, FAM, FITC, TAMRA, Rhodamin oder andere unterstützte Marker eingebracht werden.
Konstruktive Änderungen
Es können Disulfid-Cyclisierung, Head-to-Tail-Cyclisierung, Seitenketten-Cyclisierung oder eingeschränkte Strukturen untersucht werden.
Chemische Modifikationen
Phosphorylierung, Methylierung, PEGylierung, Lipidierung, Isotopenmarkierung, D-Aminosäuren und nicht-natürliche Aminosäuren können in Betracht gezogen werden.
Reaktive Gruppen und Linker
Es können Azid-, Alkin-, Maleimid- und Cystein-Gruppen sowie Ahx und andere Spacer eingebaut werden.
Trägerkonjugation
Gegebenenfalls können KLH, BSA, OVA oder ein anderer technisch geeigneter Träger verwendet werden.
Leitfaden zur Auswahl von Modifikationen
| Forschungsziel | Mögliche Änderung |
|---|---|
| Terminalgebühr senken | Acetylierung oder Amidierung |
| Fluoreszenzdetektion aktivieren | FAM, FITC, TAMRA oder ein anderer Farbstoff |
| Unterstützung der Affinitätsabscheidung | Biotin- oder Biotin-Linker-Struktur |
| Trägerbefestigung aktivieren | Cystein-, Linker- oder Trägerkonjugation |
| Kontrolle der Peptidkonformation | Cyclisierung |
| Hydrodynamische Größe erhöhen | PEGylierung |
| Die Membranassoziation erhöhen | Lipidierung |
| Unterstützung der analytischen Rückverfolgung | Markierung mit stabilen Isotopen |
| Klickchemie aktivieren | Azid- oder Alkin-Gruppe |
Wie wird ein Projekt zur Entwicklung modifizierter Peptide gesteuert?
Das Forschungsziel ist definiert
Zunächst wird die gewünschte Funktion der Modifikation erläutert, beispielsweise Nachweis, Konjugation, Strukturkontrolle, Löslichkeit oder analytische Rückverfolgung.
Die Befestigungsposition ist ausgewählt
Anschließend wird der N-Terminus, der C-Terminus oder eine bestimmte Seitenkette ausgewählt.
Die Anforderungen an den Linker werden überprüft
Gegebenenfalls kann ein Abstandhalter hinzugefügt werden, um sterische Beeinträchtigungen zwischen dem Peptid und der gebundenen Gruppe zu verringern.
Die Machbarkeit wird geprüft
Anschließend werden die Auswirkungen der Modifikation auf die Ladung, die Hydrophobie, die Syntheseausbeute, die Löslichkeit und die Reinigung untersucht.
Es werden Analysemethoden ausgewählt
Je nach modifizierter Struktur kann zwischen HPLC, MS, UV-Detektion, Aminosäureanalyse oder einer anderen vereinbarten Methode gewählt werden.
Die endgültige Spezifikation ist genehmigt
Abschließend werden die Sequenz, die Modifikation, die Position, der Linker, die Reinheit, die Menge und das Analysepaket bestätigt.
Besprechen Sie Ihr modifiziertes Peptid-Design
Geben Sie die Sequenz, die Modifikation, die Bindungsposition, die Anforderungen an den Linker, die Reinheit, die Menge und den Forschungszweck an.



